另外核内lncRNA是不是比较难干扰啊

以前不了解病毒包装，还以为很危险，后来才知道质粒转染是通过化学脂质体转染，病毒包装是生物方式，但是小鼠的这个细胞，那种方式效果更好一点？目的基因2300bp。

有没有好的国产的转染试剂推荐的呀，用进口的包毒，细胞一直污染，实在是伤不起。想换个国产的推荐，最好能有试用装申请。

求助各位，我有个基因大小大概是5880个碱基，是构建质粒转染效果好，还是可以考虑病毒包装来实现。用病毒包装的话该考虑哪种病毒呢？

我用二代慢病毒质粒过表达一个基因。基因长度在2.6kb，后面用T2A连接一个荧光蛋白，荧光蛋白大约在700kb。就是启动子-基因-T2A-荧光蛋白，这样一个模式。但是转染之后，只表达荧光蛋白的对照组很亮，有过表达基因的比较暗，病毒的回收量也比较少。

请问，这是因为插入片段太长导致的么？有没有什么方法提高病毒的量？谢谢解答！

因实验需要，需要向乳腺癌细胞231中转染CRISPR融合蛋白质粒，如果不算慢病毒本身的骨架，就有有13000bp，加上慢病毒，可能就超过15000bp。现在很纠结要不要采用慢病毒包装，因为不知道慢病毒转染大质粒的效率。请教各位大佬

用lipoo2000做转染的时候，在细胞量很少的情况下，加入转染试剂和质粒4小时左右，出现很多小黑点，这是为什么呀？？？？很急

已经用的是有效果的那条sirna了，不知道为啥蛋白没变化

用293T细胞包装病毒后，一般是48小时收上清对吧，可是考虑到包装的病毒会重新感染原本制造病毒的细胞，那什么时候收病毒，滴度会最好呢，有哪位大神有相关的经验。我们师兄说36小时收也可以，但是我始终不确定多久之后收会最好。故求大神指点迷津呀~